树突状细胞（dendritic cell，DC）被认为是当前已知功能最强的抗原递呈细胞（APC）。一颗DC能够激活100至3000个T细胞，其效能为巨噬细胞和B细胞的100至1000倍。DC通过处理肿瘤抗原并将其递呈给T细胞，从而显著刺激初始T细胞的增殖，而其他种类的APC（如巨噬细胞、B细胞）则仅能激活已活化或记忆T细胞。

目前，DC的体外培养主要通过使用细胞因子从骨髓、外周血和脐带血中的DC前体进行定向诱导。由于骨髓和脐带血的取样较为困难，外周血因其取材简单且不需要复杂的筛选和纯化过程，成为目前临床获得DC的较理想途径。

在外周血CD14+单核细胞的DC生成过程中，Ficoll梯度离心法可从全血中分离出人外周血单个核细胞（PBMC）。后续的贴壁法或磁珠法则用于富集CD14+单核细胞。贴壁法需要在37℃下培养1-2小时，使单核细胞贴壁，而磁珠法则通过阳性分选获取高纯度的单核细胞。注意：在这一过程中，需要去除悬浮的淋巴细胞，以确保获得较高的DC纯度。

在培养的第三天，进行半量换液，并添加GM-CSF和IL-4的等体积新鲜培养基，继续在培养箱中培养两天。此时，贴壁的细胞可能出现轻微的浮起现象，这是正常的半悬浮状态。到第五天，轻轻吹打培养基后收获悬浮细胞和松散贴壁细胞，经过离心后获得未成熟的MoDC。随着培养的进行，DC的形态会逐渐变化，表面标志分子的流式细胞检测方法通常用于分析DC的成熟状态及其功能特征。

除了IL-6、TNF-α和MCP-1外，人DC通常还可以检测IL-12p70、IL-10和IL-1β等细胞因子，这些因子更全面地反映了人DC的免疫调节功能。小鼠DC的检测则主要关注IL-6、TNF-α和MCP-1，主要反映其炎症反应和趋化能力。多细胞混合培养（MLR）利用DC激活T淋巴细胞的机制，通过检测T细胞增殖等反应，评估免疫应答的强度。

为支持DC的研究，尊龙凯时提供了体外诱导培养所需的科研级和GMP级细胞因子，确保高活性、低内毒素及高批间一致性。这些细胞因子包括GM-CSF、IL-4、TNF-α、IL-6和IL-1β等，助力DC细胞的高效、稳定和合规培养，推动免疫治疗的研究进程。